一、無色片

染色結束后，切片中見不到任何陽性信號。這是常規(guī)工作中比較常見的現(xiàn)象，出現(xiàn)這種現(xiàn)象，有兩種可能：

1、真陰性結果：整個染色過程沒有出現(xiàn)問題，組織或細胞確實不表達與抗體相關的抗原。

2、假陰性結果：即此陰性結果不是真實的反映。假陰性結果又可分為兩種情況：（1）切片中根本就不包含所預期檢查的組織或細胞。出現(xiàn)這種情況，要麼是選擇錯了切片、抗體或蠟塊。獲得正確的切片進行染色是獲得正確結果的前提。（2）染色過程中的某一或某些環(huán)節(jié)出了問題。比如，組織未進行抗原修復，有的組織必須經(jīng)過抗原修復才能檢測抗原表達；或選用了只能用于冰凍組織而不能用于石蠟包埋組織的抗體；或一抗失效，雖然抗體失效在理論上是一個逐漸的過，但偶爾也遇到突然失效的情況，抗體長期不用和/或已超過有效期是主要的原因。也可見于染色過程中漏掉了某一環(huán)節(jié)，如忘記加二抗或三抗，或用了兩次二抗而缺少了三抗，或配制DAB時少了過氧化氫。為了避免這種簡單的錯誤，有一種簡單的方法：在三抗孵育結束時，將切片上的三抗甩在一張白紙上，在將配制好的DAB滴一滴在白紙的三抗上，觀察是否出現(xiàn)棕色。如果出現(xiàn)了，證明三抗和DAB的配制過程沒有錯誤。如果這種DAB再滴到切片上沒有出現(xiàn)任何陽性信號，問題一定是出在三抗以前。如果紙上不出現(xiàn)棕色反應，問題肯定在三抗或DAB的配制過程。這種簡單方法能迅速的幫助我們查找出現(xiàn)問題可能的原因。

二、“雜音"染色片

免疫組化除正常的真實的陽性信號外常常會遇到不正常的背景著色，這些非正常的著色稱為“雜音"染色?！半s音"染色種類繁多，產生的原因也多種多樣，為了便于說明，以下將其歸納為下面幾種。

1、全片著色

全片著色是指整個切片全都染上了顏色，著色的強度可深可淺，總之，分不清那些組織是陽性那些組織是陰性。出現(xiàn)這種現(xiàn)象的原因有：

（1）抗體濃度過高：一抗?jié)舛冗^高是常見的原因之一。解決辦法是，每次使用新抗體前應當對其工作濃度進行測試，使每一抗體個體化，找到適合自己實驗室的理想工作濃度，既使是即用型的抗體也應如此，不能只簡單的按說明書進行染色。

（2）抗體孵育時間過長或溫度較高：解決辦法是，嚴格執(zhí)行操作規(guī)程，最好隨身佩帶報時表或報時鐘，及時提醒，避免因遺忘而造成時間延長?，F(xiàn)在流行的二步法（Polymer）敏感性很高，要求一抗孵育的時間不是傳統(tǒng)的1小時，而是30分鐘，因此，要根據(jù)染色結果進行調整。

（3）DAB變質和顯色時間太長：DAB最好現(xiàn)用現(xiàn)配，如有沉渣應進行過濾后再用。配制好的DAB不應存放時間太長，因為在沒有酶的情況下，過氧化氫也會游離出氧原子與DAB產生反應而降低DAB的效力，未用完的DAB存放在冰箱里幾天后再用這種似乎節(jié)約的辦法是不可取的。DAB的顯色最好在顯微鏡下監(jiān)控，達到理想的染色程度時立即終止反應。不過當染色片太多時或用染色機時，這樣做似乎不現(xiàn)實，但至少應對一些新的或少用的抗體顯色時進行監(jiān)控，避免顯色時間過長。

（4）組織變干：修復液溢出后未及時補充液體、染色切片太多、動作太慢、忘記滴液、滴液流失等都是造成組織變干的原因。

（5）切片在緩沖液或修復液中浸泡時間太長（大于24小時）：原因上不清楚，但現(xiàn)象存在。有的實驗室喜歡前一天將切片脫蠟至修復，第二天加抗體進行免疫組化染色，如果將裝有切片和修復液的容器放在4度冰箱過夜，對結果無明顯影響，如果放在室溫，特別是炎熱的夏天，會出現(xiàn)背景著色，因此，不可存放時間太長。

（6）一抗變質、質量差的多克隆抗體：注意抗體的有效期，過期的抗體要麼不顯色要麼背景著色。用新買的抗體時最好設立陽性對照和用使用過的抗體作比較。

2、切片邊緣著色

切片邊緣著色也是一種常見的現(xiàn)象，這種現(xiàn)象稱為邊緣效應。產生的原因：

（1）組織邊緣與玻片粘貼不牢，邊緣組織松脫漂浮在液體，每次清洗不易將組織下面試劑洗盡所致。解決辦法：制備優(yōu)質的膠片（APES或多聚賴氨酸），切出盡量薄的組織切片，不厚于4微米，組織的前期處理應規(guī)范，盡量避免選用壞死較多的組織。

（2）切片上滴加的試劑未充分覆蓋組織，邊緣的試劑容易首先變干，濃度較中心組織高而致染色深。解決辦法：試劑要充分覆蓋組織，應超出組織邊緣2mm。

3、“陰陽臉"著色

指組織一半著色一半無著色，形成交界清晰或不甚清晰的兩種染色結果。其成因是試劑僅覆蓋了部分組織而不是全部。如加試劑后未讓試劑流散開而集中在部分組織上。通常應該在加完試劑后，仔細看一遍，是否有的組織未被試劑完w全覆蓋，如有這種情況，建議用牙簽而不是用吸頭或試劑瓶口將試劑引流開使之將組織全部覆蓋。另外，染片盒不平，切片傾斜，雖然開始試劑已全部覆蓋了組織，但后來試劑流向一邊，部分組織未被試劑覆蓋。對于這種問題，只要留心或想到了很容易發(fā)現(xiàn)，也很容易解決。

4、灶片狀著色

切片中著色區(qū)東一塊西一塊，呈灶片狀分布，出現(xiàn)這種問題的原因有：

（1）裱片時水未排盡，在局部形成氣泡使組織突起，染色時試劑滲入后不易洗盡，顯色過深所致。解決辦法是，漂片盒里的氣泡應去盡，晾片熱臺不能平放，應有45度左右的斜度，利于水流走和蒸發(fā)。

（2）壞死組織灶，組織壞死后細胞破壞、酶的釋放、蛋白游離、分解，復雜的肽鏈殘段（如Fc段）可能與一抗或/和二抗結合導致最終著色。解決辦法是在選擇染色切片時應避免選擇壞死組織較多的切片。

（3）制作APES膠片時，膠的濃度太高，干燥后在玻片上留下白色小點，顯色時白色小點著色。解決辦法是按照標準的制備方法進行，即5%鹽酸酒精（5ml鹽酸+95%酒精95ml）浸泡玻片4小時、熱水沖洗玻片1小時、蒸餾水洗玻片1分鐘、丙酮浸泡玻片5秒鐘后空氣干燥（室溫）、2%APES（2ml APES+98ml丙酮）浸泡玻片5分鐘、玻片過一下丙酮（1-2秒鐘）、玻片過一下蒸餾水（1-2秒鐘）、37度過夜干燥、室溫儲存?zhèn)溆?。如果制片過程中，因丙酮逐漸揮發(fā)而膠變濃時可適當加入一些丙酮。

5、間質著色

著色部位主要在間質，間質著色的原因很多，如抗體與組織中的蛋白質因蛋白疏水基團相互作用形成非特異性的連接而著色，加一抗前的血清封閉這一步就是為了避免非特異型的結合。又如血清中的免疫球蛋白常常滲出到組織間質，很容易與抗體結合，造成間質著色，特別是lambda和kappa染色時。當甲狀腺膠質外溢到組織間質時，做甲狀腺球蛋白染色也會出現(xiàn)間質著色?？贵w不純或抗體被污染也可出現(xiàn)間質著色，我們曾遇到CD20抗體不純，除了染上B細胞外還染上了間質。

6、細胞漿著色

胞漿著色是所有“雜音"染色中最j具有欺騙性的著色，著色區(qū)局限在細胞內，間質無著色，看上去與真實的免疫反應著色幾乎一樣，很難區(qū)別。胞漿里含有較多的蛋白質，因此，很多非特異性的染色除了見于間質也可以出現(xiàn)在胞漿中。這種原因造成的著色，可以通過血清封閉解決。還有因內源酶造成的著色，如血紅蛋白（紅細胞）、肌紅蛋白（肌細胞）、細胞色素（粒細胞、單核細胞）、過氧化氫酶（肝、腎），這些可用過氧化氫進行封閉。巨噬細胞吞噬各種抗原物質或Fc片斷而出現(xiàn)胞漿著色，這種著色不易避免，但可以通過形態(tài)學辨認出巨噬細胞而引起重視。內源性生物s素的著色最j具有欺騙性，因為它廣泛的存在于組織細胞中，我們研究結果顯示：冰凍組織中存在內源性生物s素，經(jīng)福馬林固定石蠟包埋后生物s素被封閉，加熱抗原修復后造成內源性生物s素暴露，內源性生物s素暴露的強度在不同的組織有所不同，從弱陽性（+）到強陽性（+++），內源性生物s素在組織中的分布形式，既有散在分布也有彌漫分布，主要以顆粒狀形式存在于胞漿中，內源性生物s素廣泛存在于上皮源性組織，特別是腺上皮組織，亦存在部分非上皮組織，內源性生物s素不僅存在人體組織也存在大鼠組織，內源性生物s素暴露的強弱與修復液有關，其強度增加依次為：檸檬酸、EDTA、EGTA，熱抗原修復暴露的內源性生物s素可被雞蛋清封閉，非生物s素檢測系統(tǒng)Polymer兩步法（EliVision、EnVision）可避免生物s素干擾。

7、細胞核著色

不適當?shù)慕M織處理可以出現(xiàn)細胞核著色，如組織在二甲/苯里浸泡時間太長（如從星期五浸泡到下星期一）、緩沖液中浸泡時間太長、組織變干、微波修復液的pH值和修復時間不當或修復過程中修復液留下得太少，未沒過組織等。解決辦法是嚴格按照操作常規(guī)進行工作。免疫組化除正常的真實的陽性信號外常常會遇到不正常的背景著色，這些非正常的著色稱為“雜音"染色?！半s音"染色種類繁多，產生的原因也多種多樣，為了便于說明，以下將其歸納為下面幾種。

1、切片邊緣著色

切片邊緣著色也是一種常見的現(xiàn)象，這種現(xiàn)象稱為邊緣效應。產生的原因：（1）組織邊緣與玻片粘貼不牢，邊緣組織松脫漂浮在液體，每次清洗不易將組織下面試劑洗盡所致。解決辦法：制備優(yōu)質的膠片（APES或多聚賴氨酸），切出盡量薄的組織切片，不厚于4微米，組織的前期處理應規(guī)范，盡量避免選用壞死較多的組織。（2）切片上滴加的試劑未充分覆蓋組織，邊緣的試劑容易首先變干，濃度較中心組織高而致染色深。解決辦法：試劑要充分覆蓋組織，應超出組織邊緣2mm。

2、間質著色

著色部位主要在間質，間質著色的原因很多，如抗體與組織中的蛋白質因蛋白疏水基團相互作用形成非特異性的連接而著色，加一抗前的血清封閉這一步就是為了避免非特異型的結合。又如血清中的免疫球蛋白常常滲出到組織間質，很容易與抗體結合，造成間質著色，特別是lambda和kappa染色時。當甲狀腺膠質外溢到組織間質時，做甲狀腺球蛋白染色也會出現(xiàn)間質著色?？贵w不純或抗體被污染也可出現(xiàn)間質著色，我們曾遇到CD20抗體不純，除了染上B細胞外還染上了間質。

3、“陰陽臉"著色

指組織一半著色一半無著色，形成交界清晰或不甚清晰的兩種染色結果。其成因是試劑僅覆蓋了部分組織而不是全部。如加試劑后未讓試劑流散開而集中在部分組織上。通常應該在加完試劑后，仔細看一遍，是否有的組織未被試劑完w全覆蓋，如有這種情況，建議用牙簽而不是用吸頭或試劑瓶口將試劑引流開使之將組織全部覆蓋。另外，染片盒不平，切片傾斜，雖然開始試劑已全部覆蓋了組織，但后來試劑流向一邊，部分組織未被試劑覆蓋。對于這種問題，只要留心或想到了很容易發(fā)現(xiàn)，也很容易解決。

4、灶片狀著色

切片中著色區(qū)東一塊西一塊，呈灶片狀分布，出現(xiàn)這種問題的原因有：（1）裱片時水未排盡，在局部形成氣泡使組織突起，染色時試劑滲入后不易洗盡，顯色過深所致。解決辦法是，漂片盒里的氣泡應去盡，晾片熱臺不能平放，應有45度左右的斜度，利于水流走和蒸發(fā)（2）壞死組織灶，組織壞死后細胞破壞、酶的釋放、蛋白游離、分解，復雜的肽鏈殘段（如Fc段）可能與一抗或/和二抗結合導致最終著色。解決辦法是在選擇染色切片時應避免選擇壞死組織較多的切片。（3）制作APES膠片時，膠的濃度太高，干燥后在玻片上留下白色小點，顯色時白色小點著色。解決辦法是按照標準的制備方法進行，即5%鹽酸酒精（5ml鹽酸+95%酒精95ml）浸泡玻片4小時、熱水沖洗玻片1小時、蒸餾水洗玻片1分鐘、丙酮浸泡玻片5秒鐘后空氣干燥（室溫）、2%APES（2ml APES+98ml丙酮）浸泡玻片5分鐘、玻片過一下丙酮（1-2秒鐘）、玻片過一下蒸餾水（1-2秒鐘）、37度過夜干燥、室溫儲存?zhèn)溆?。如果制片過程中，因丙酮逐漸揮發(fā)而膠變濃時可適當加入一些丙酮。

5、細胞漿著色

胞漿著色是所有“雜音"染色中最j具有欺騙性的著色，著色區(qū)局限在細胞內，間質無著色，看上去與真實的免疫反應著色幾乎一樣，很難區(qū)別。胞漿里含有較多的蛋白質，因此，很多非特異性的染色除了見于間質也可以出現(xiàn)在胞漿中。這種原因造成的著色，可以通過血清封閉解決。還有因內源酶造成的著色，如血紅蛋白（紅細胞）、肌紅蛋白（肌細胞）、細胞色素（粒細胞、單核細胞）、過氧化氫酶（肝、腎），這些可用過氧化氫進行封閉。巨噬細胞吞噬各種抗原物質或Fc片斷而出現(xiàn)胞漿著色，這種著色不易避免，但可以通過形態(tài)學辨認出巨噬細胞而引起重視。內源性生物s素的著色最j具有欺騙性，因為它廣泛的存在于組織細胞中，我們研究結果顯示：冰凍組織中存在內源性生物s素，經(jīng)福馬林固定石蠟包埋后生物s素被封閉，加熱抗原修復后造成內源性生物s素暴露，內源性生物s素暴露的強度在不同的組織有所不同，從弱陽性（+）到強陽性（+++），內源性生物s素在組織中的分布形式，既有散在分布也有彌漫分布，主要以顆粒狀形式存在于胞漿中，內源性生物s素廣泛存在于上皮源性組織，特別是腺上皮組織，亦存在部分非上皮組織，內源性生物s素不僅存在人體組織也存在大鼠組織，內源性生物s素暴露的強弱與修復液有關，其強度增加依次為：檸檬酸、EDTA、EGTA，熱抗原修復暴露的內源性生物s素可被雞蛋清封閉，非生物s素檢測系統(tǒng)Polymer兩步法（EliVision、EnVision）可避免生物s素干擾。

6、細胞核著色

不適當?shù)慕M織處理可以出現(xiàn)細胞核著色，如組織在二甲/苯里浸泡時間太長（如從星期五浸泡到下星期一）、緩沖液中浸泡時間太長、組織變干、微波修復液的pH值和修復時間不當或修復過程中修復液留下得太少，未沒過組織等。解決辦法是嚴格按照操作常規(guī)進行工。